Приймання добавок астаксантину зменшує рівень малонового діальдегіду (МДА) та амфотерину (HMGB1) після виконання ексцентричних вправ: Рандомізоване контрольоване дослідження студентів, які активно займаються рекреаційною діяльністю
DOI:
https://doi.org/10.17309/tmfv.2025.5.20Ключові слова:
ексцентричні вправи, малоновий діальдегід, HMGB1, окислювальний стрес, антиоксидант, запаленняАнотація
Історія питання. Ексцентричні вправи спричиняють механічне напруження та мікроструктурні пошкодження скелетних м’язів, що провокує окислювальний стрес та запалення, які погіршують процес відновлення. Малоновий діальдегід (МДА) та білок групи високої рухливості 1 (амфотерин, HMGB1) є надійними біомаркерами ліпідної пероксидації та системного запалення. Астаксантин, каротиноїд морського походження, має сильні антиоксидантні та протизапальні властивості, які можуть пом’якшити зазначені реакції.
Мета дослідження. Мета цього дослідження полягала у вивченні того, чи 14-денне приймання добавок астаксантину послаблює підвищення рівнів MДA та HMGB1 у плазмі крові після інтенсивних ексцентричних вправ у рекреаційно активних студентів чоловічої статі.
Матеріали та методи. У рандомізованому, подвійно сліпому, плацебо-контрольованому дослідженні 54 студенти чоловічої статі, які активно займаються рекреаційною діяльністю, були розподілені на дві групи: одна група отримувала 12 мг/день натурального астаксантину (АСТ, n = 27), а інша — плацебо (ПЛA, n = 27) протягом 14 днів. На 16-й день учасники виконали стандартизований протокол ексцентричних вправ (10 × 10 стрибків з висоти 60 см). Зразки венозної крові було зібрано за 1 годину перед виконанням вправ (T0), через 1 годину після вправ (T1) та через 24 години після виконання вправ (T2) з метою вимірювання показників MДA (аналіз реактивних речовин тіобарбітурової кислоти, TBARS) та HMGB1 (імуноферментний аналіз, ELISA) у плазмі крові. Аналіз даних проводився з використанням дисперсійного аналізу з повторними вимірами або t-критерію Велча з поправкою Бонферроні (p < 0.05).
Результати. В обох групах спостерігалося значне підвищення рівнів MДA та HMGB1 від T0 до T1 (p < 0.001). Однак група AСT продемонструвала менші підвищення рівнів MДA (+151% проти +187%, p = 0.021) та HMGB1 (+279% проти +367%, p = 0.014) порівняно з групою ПЛА. На етапі T2 обидва біомаркери знизилися до базового рівня, причому більші зниження показників спостерігалися в групі AСT (MДA: −27% проти −15%, p = 0.018; HMGB1: −55% проти −40%, p = 0.012).
Висновки. Приймання добавок астаксантину протягом 14 днів сприяло зменшенню окислювального стресу та запальних реакцій після ексцентричних вправ, що підтверджується нижчими рівнями МДА та HMGB1 порівняно з плацебо. Отримані результати свідчать, що астаксантин може бути ефективною нутритивною стратегією щодо захисту від окислювального пошкодження, спричиненого фізичними навантаженнями, та регулювання запальних процесів у фізично активних осіб.
Завантаження
Посилання
Irawan, R. J., Sudijandoko, A., Wahyudi, H., Kumaat, N. A., Bawono, M. N., Rimawati, N., & Wijayanto, A. (2024). Preventive effect of yacon leaves capsule in reducing symptoms of Exercise-Induced Muscle Damage. Healthcare in Low-Resource Settings. https://doi.org/10.4081/hls.2024.13031 DOI: https://doi.org/10.4081/hls.2024.13031
Markus, I., Constantini, K., Hoffman, J. R., Bartolomei, S., & Gepner, Y. (2021). Exercise-induced muscle damage: mechanism, assessment and nutritional factors to accelerate recovery. European Journal of Applied Physiology, 121(4), 969-992. https://doi.org/10.1007/s00421-020-04566-4 DOI: https://doi.org/10.1007/s00421-020-04566-4
Lemire, M., Hureau, T. J., Favret, F., Geny, B., Kouassi, B. Y. L., Boukhari, M., Lonsdorfer, E., Remetter, R., & Dufour, S. P. (2021). Physiological factors determining downhill vs uphill running endurance performance. Journal of Science and Medicine in Sport, 24(1), 85-91. https://doi.org/10.1016/j.jsams.2020.06.004 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jsams.2020.06.004
Stožer, A., Vodopivc, P., & Križančić Bombek, L. (2020). Pathophysiology of exercise-induced muscle damage and its structural, functional, metabolic, and clinical consequences. Physiological Research, 565-598. https://doi.org/10.33549/physiolres.934371 DOI: https://doi.org/10.33549/physiolres.934371
da Silva, W., Machado, Á. S., Souza, M. A., Mello-Carpes, P. B., & Carpes, F. P. (2018). Effect of green tea extract supplementation on exercise-induced delayed onset muscle soreness and muscular damage. Physiology & Behavior, 194, 77-82. https://doi.org/10.1016/j.physbeh.2018.05.006 DOI: https://doi.org/10.1016/j.physbeh.2018.05.006
Fleckenstein, J., Neuberger, E. W. I., Bormuth, P., Comes, F., Schneider, A., Banzer, W., Fischer, L., & Simon, P. (2021). Investigation of the Sympathetic Regulation in Delayed Onset Muscle Soreness: Results of an RCT. Frontiers in Physiology, 12. https://doi.org/10.3389/fphys.2021.697335 DOI: https://doi.org/10.3389/fphys.2021.697335
Jomova, K., Raptova, R., Alomar, S. Y., Alwasel, S. H., Nepovimova, E., Kuca, K., & Valko, M. (2023). Reactive oxygen species, toxicity, oxidative stress, and antioxidants: chronic diseases and aging. Archives of Toxicology, 97(10), 2499-2574. https://doi.org/10.1007/s00204-023-03562-9 DOI: https://doi.org/10.1007/s00204-023-03562-9
Wang, J., Liu, S., Li, G., & Xiao, J. (2020). Exercise Regulates the Immune System (pp. 395–408). https://doi.org/10.1007/978-981-15-1792-1_27 DOI: https://doi.org/10.1007/978-981-15-1792-1_27
Zhang, Q. (2023). Ginsenoside Rg1 Attenuates Eccentric Exercise-Induced Muscle Damage via the Modulation of Lipid Peroxidation and Inflammation. Journal of Biomedical Nanotechnology, 19(12), 2235-2242. https://doi.org/10.1166/jbn.2023.3727 DOI: https://doi.org/10.1166/jbn.2023.3727
Tu, H., & Li, Y.-L. (2023). Inflammation balance in skeletal muscle damage and repair. Frontiers in Immunology, 14. https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1133355 DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1133355
Lin, L., Li, J., Song, Q., Cheng, W., & Chen, P. (2022). The role of HMGB1/RAGE/TLR4 signaling pathways in cigarette smoke‐induced inflammation in chronic obstructive pulmonary disease. Immunity, Inflammation and Disease, 10(11). https://doi.org/10.1002/iid3.711 DOI: https://doi.org/10.1002/iid3.711
Tang, D., Wang, X., Chen, Y., Yang, X., Hu, S., Song, N., Wang, J., Cheng, J., & Wu, S. (2022). Treadmill training improves respiratory function in rats after spinal cord injury by inhibiting the HMGB1/TLR-4/NF-κB signaling pathway. Neuroscience Letters, 782, 136686. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2022.136686 DOI: https://doi.org/10.1016/j.neulet.2022.136686
Pattelongi, I., Huldani, M. N. M., & Idris, I. (2021). Immune Response (Cortisol, TNFΑ, HMGB1) in Trained and Untrained Adolescent after 12 Minutes Run Exercise. Journal of Hunan University Natural Sciences, 48(10).
Ali, M. A., Pangestu, B., Rahayu, S., Anggita, G. M., Kurniawati, D. M., Noer, E. R., & Mohamed, A. M. D. (2023). Foam rolling reduced total creatine kinase in acute muscle inflammation following long-distance running. Journal Sport Area, 8(1), 117-122. https://doi.org/10.25299/sportarea.2023.vol8(1).12144 DOI: https://doi.org/10.25299/sportarea.2023.vol8(1).12144
Chang, W.-D., Chang, N.-J., Lin, H.-Y., & Wu, J.-H. (2020). Effects of Acupuncture on Delayed-Onset Muscle Soreness: A Systematic Review and Meta-Analysis. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 2020, 1–11. https://doi.org/10.1155/2020/5864057 DOI: https://doi.org/10.1155/2020/5864057
Sulistyarto, S., Irawan, R., Kumaat, N. A., & Rimawati, N. (2022). Correlation of Delayed Onset Muscle Soreness and Inflammation Post-exercise Induced Muscle Damage. Open Access Macedonian Journal of Medical Sciences, 10(A), 1688–1694. https://doi.org/10.3889/oamjms.2022.10991 DOI: https://doi.org/10.3889/oamjms.2022.10991
Mas-Bargues, C., Escrivá, C., Dromant, M., Borrás, C., & Viña, J. (2021). Lipid peroxidation as measured by chromatographic determination of malondialdehyde. Human plasma reference values in health and disease. Archives of Biochemistry and Biophysics, 709, 108941. https://doi.org/10.1016/j.abb.2021.108941 DOI: https://doi.org/10.1016/j.abb.2021.108941
Xue, J., Suarez, J. S., Minaai, M., Li, S., Gaudino, G., Pass, H. I., Carbone, M., & Yang, H. (2021). HMGB1 as a therapeutic target in disease. Journal of Cellular Physiology, 236(5), 3406-3419. https://doi.org/10.1002/jcp.30125 DOI: https://doi.org/10.1002/jcp.30125
Barker, G. A., Parten, A. L., Lara, D. A., Hannon, K. E., McAllister, M. J., & Waldman, H. S. (2023). Astaxanthin Supplementation Reduces Subjective Markers of Muscle Soreness following Eccentric Exercise in Resistance-Trained Men. Muscles, 2(2), 228-237. https://doi.org/10.3390/muscles2020017 DOI: https://doi.org/10.3390/muscles2020017
Bjørklund, G., Gasmi, A., Lenchyk, L., Shanaida, M., Zafar, S., Mujawdiya, P. K., Lysiuk, R., Antonyak, H., Noor, S., Akram, M., Smetanina, K., Piscopo, S., Upyr, T., & Peana, M. (2022). The Role of Astaxanthin as a Nutraceutical in Health and Age-Related Conditions. Molecules, 27(21), 7167. https://doi.org/10.3390/molecules27217167 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules27217167
Waldman, H. (2024). Astaxanthin Supplementation as a Potential Strategy for Enhancing Mitochondrial Adaptations in the Endurance Athlete: An Invited Review. Nutrients, 16(11), 1750. https://doi.org/10.3390/nu16111750 DOI: https://doi.org/10.3390/nu16111750
Heng, N., Gao, S., Chen, Y., Wang, L., Li, Z., Guo, Y., Sheng, X., Wang, X., Xing, K., Xiao, L., Ni, H., & Qi, X. (2021). Dietary supplementation with natural astaxanthin from Haematococcus pluvialis improves antioxidant enzyme activity, free radical scavenging ability, and gene expression of antioxidant enzymes in laying hens. Poultry Science, 100(5), 101045. https://doi.org/10.1016/j.psj.2021.101045 DOI: https://doi.org/10.1016/j.psj.2021.101045
Medoro, A., Davinelli, S., Milella, L., Willcox, B., Allsopp, R., Scapagnini, G., & Willcox, D. (2023). Dietary Astaxanthin: A Promising Antioxidant and Anti-Inflammatory Agent for Brain Aging and Adult Neurogenesis. Marine Drugs, 21(12), 643. https://doi.org/10.3390/md21120643 DOI: https://doi.org/10.3390/md21120643
Eldessouki, E. A. A., Elshopakey, G. E., Elbahnaswy, S., Shakweer, M. S., Abdelwarith, A. A., Younis, E. M., Davies, S. J., Mili, A., Abd El-Aziz, Y. M., Abdelnour, S. A., & Eissa, E.-S. H. (2024). Influence of astaxanthin-enriched Haematococcus pluvialis microalgae on the growth efficacy, immune response, antioxidant capacity, proinflammatory cytokines, and tissue histomorphology of hybrid red tilapia. Aquaculture International, 32(6), 7447–7468. https://doi.org/10.1007/s10499-024-01524-1 DOI: https://doi.org/10.1007/s10499-024-01524-1
Tsao, J.-P., Wu, P.-Y., Kuo, H.-T., Hong, W.-H., Chen, C.-C., Wang, M.-Y., Korivi, M., & Cheng, I.-S. (2025). Effect of astaxanthin supplementation on cycling performance, muscle damage biomarkers and oxidative stress in young adults: a randomized controlled trial. BMC Sports Science, Medicine and Rehabilitation, 17(1), 180. https://doi.org/10.1186/s13102-025-01221-3 DOI: https://doi.org/10.1186/s13102-025-01221-3
Brown, D. R., Gough, L. A., Deb, S. K., Sparks, S. A., & McNaughton, L. R. (2018). Astaxanthin in Exercise Metabolism, Performance and Recovery: A Review. Frontiers in Nutrition, 4. https://doi.org/10.3389/fnut.2017.00076 DOI: https://doi.org/10.3389/fnut.2017.00076
Owens, D. J., Twist, C., Cobley, J. N., Howatson, G., & Close, G. L. (2019). Exercise-induced muscle damage: What is it, what causes it and what are the nutritional solutions? European Journal of Sport Science, 19(1), 71-85. https://doi.org/10.1080/17461391.2018.1505957 DOI: https://doi.org/10.1080/17461391.2018.1505957
Xia, W., Tang, N., Kord-Varkaneh, H., Low, T. Y., Tan, S. C., Wu, X., & Zhu, Y. (2020). The effects of astaxanthin supplementation on obesity, blood pressure, CRP, glycemic biomarkers, and lipid profile: A meta-analysis of randomized controlled trials. Pharmacological Research, 161, 105113. https://doi.org/10.1016/j.phrs.2020.105113 DOI: https://doi.org/10.1016/j.phrs.2020.105113
Brendler, T., & Williamson, E. M. (2019). Astaxanthin: How much is too much? A safety review. Phytotherapy Research, 33(12), 3090-3111. https://doi.org/10.1002/ptr.6514 DOI: https://doi.org/10.1002/ptr.6514
Nogueira, N. M., Felappi, C. J., Lima, C. S., & Medeiros, D. M. (2020). Effects of local cryotherapy for recovery of delayed onset muscle soreness and strength following exercise-induced muscle damage: systematic review and meta-analysis. Sport Sciences for Health, 16(1), 1-11. https://doi.org/10.1007/s11332-019-00571-z DOI: https://doi.org/10.1007/s11332-019-00571-z
Sarkar, S., Debnath, M., Das, M., Bandyopadhyay, A., Dey, S. K., & Datta, G. (2021). Effect of high intensity interval training on antioxidant status, inflammatory response and muscle damage indices in endurance team male players. Apunts Sports Medicine, 56(210), 100352. https://doi.org/10.1016/j.apunsm.2021.100352 DOI: https://doi.org/10.1016/j.apunsm.2021.100352
Suzuki, K. (2021). Recent Progress in Applicability of Exercise Immunology and Inflammation Research to Sports Nutrition. Nutrients, 13(12), 4299. https://doi.org/10.3390/nu13124299 DOI: https://doi.org/10.3390/nu13124299
Uçar, N., Öner, H., Kuş, M. A., Karaca, H., & Fırat, T. (2024). The effect of neuromuscular electrical stimulation applied at different muscle lengths on muscle architecture and sarcomere morphology in rats. The Anatomical Record, 307(2), 356-371. https://doi.org/10.1002/ar.25240 DOI: https://doi.org/10.1002/ar.25240
Bouviere, J., Fortunato, R. S., Dupuy, C., Werneck-de-Castro, J. P., Carvalho, D. P., & Louzada, R. A. (2021). Exercise-Stimulated ROS Sensitive Signaling Pathways in Skeletal Muscle. Antioxidants, 10(4), 537. https://doi.org/10.3390/antiox10040537 DOI: https://doi.org/10.3390/antiox10040537
Wang, Y., Branicky, R., Noë, A., & Hekimi, S. (2018). Superoxide dismutases: Dual roles in controlling ROS damage and regulating ROS signaling. Journal of Cell Biology, 217(6), 1915–1928. https://doi.org/10.1083/jcb.201708007 DOI: https://doi.org/10.1083/jcb.201708007
Hussein, R. E., Rashed, L. A., Aboulhoda, B. E., Abdelaziz, G. M., Abdelhady, E. G., Abd El-Aal, S. A., ShamsEldeen, A., Khalifa, M. M., & Morsi, H. (2021). The Role of Thymoquinone in Mitigating Carbon Tetrachloride-Induced Hepatocellular Carcinoma in Rats: Targeting the CHOP-1/JNK/P38 MAPK, NFκB/TNF-α/IL-10, and Bax/Bcl-2/Caspase-3 Signalling Pathways. Folia Biologica, 69(1), 1–9. https://doi.org/10.3409/fb_69-1.01 DOI: https://doi.org/10.3409/fb_69-1.01
Powers, S. K., Duarte, J., Kavazis, A. N., & Talbert, E. E. (2010). Reactive oxygen species are signalling molecules for skeletal muscle adaptation. Experimental Physiology, 95(1), 1-9. https://doi.org/10.1113/expphysiol.2009.050526 DOI: https://doi.org/10.1113/expphysiol.2009.050526
Irawan, R. J., Sudijandoko, A., Wahyudi, H., Kumaat, N. A., Bawono, M. N., Rimawati, N., & Wijayanto, A. (2024). Preventive effect of yacon leaves capsule in reducing symptoms of Exercise-Induced Muscle Damage. Healthcare in Low-Resource Settings. https://doi.org/10.4081/hls.2024.13031 DOI: https://doi.org/10.4081/hls.2024.13031
Langston, P. K., & Mathis, D. (2024). Immunological regulation of skeletal muscle adaptation to exercise. Cell Metabolism, 36(6), 1175-1183. https://doi.org/10.1016/j.cmet.2024.04.001 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cmet.2024.04.001
Farias-Junior, L. F., Browne, R. A. V., Freire, Y. A., Oliveira-Dantas, F. F., Lemos, T. M. A. M., Galvão-Coelho, N. L., Hardcastle, S. J., Okano, A. H., Aoki, M. S., & Costa, E. C. (2019). Psychological responses, muscle damage, inflammation, and delayed onset muscle soreness to high-intensity interval and moderate-intensity continuous exercise in overweight men. Physiology and Behavior, 199, 200-209. https://doi.org/10.1016/j.physbeh.2018.11.028 DOI: https://doi.org/10.1016/j.physbeh.2018.11.028
Minahan, C. L., Poke, D. P., Morrison, J., & Bellinger, P. M. (2020). Muscle Damage and Metabolic Responses to Repeated-Sprint Running With and Without Deceleration. Journal of Strength and Conditioning Research, 34(12), 3423-3430. https://doi.org/10.1519/JSC.0000000000002164 DOI: https://doi.org/10.1519/JSC.0000000000002164
Arazi, H., Eghbali, E., & Suzuki, K. (2021). Creatine Supplementation, Physical Exercise and Oxidative Stress Markers: A Review of the Mechanisms and Effectiveness. Nutrients, 13(3), 869. https://doi.org/10.3390/nu13030869 DOI: https://doi.org/10.3390/nu13030869
Lee, M.-C., Hsu, Y.-J., Yang, L.-H., Huang, C.-C., & Ho, C.-S. (2021). Ergogenic Effects of Green Tea Combined with Isolated Soy Protein on Increasing Muscle Mass and Exercise Performance in Resistance-Trained Mice. Nutrients, 13(12), 4547. https://doi.org/10.3390/nu13124547 DOI: https://doi.org/10.3390/nu13124547
Ammar, A., Trabelsi, K., Boukhris, O., Glenn, J., Bott, N., Masmoudi, L., Hakim, A., Chtourou, H., Driss, T., Hoekelmann, A., & El Abed, K. (2020). Effects of Aerobic-, Anaerobic- and Combined-Based Exercises on Plasma Oxidative Stress Biomarkers in Healthy Untrained Young Adults. International Journal of Environmental Research and Public Health, 17(7), 2601. https://doi.org/10.3390/ijerph17072601 DOI: https://doi.org/10.3390/ijerph17072601
Souissi, W., Bouzid, M. A., Farjallah, M. A., Ben Mahmoud, L., Boudaya, M., Engel, F. A., & Sahnoun, Z. (2020). Effect of Different Running Exercise Modalities on Post-Exercise Oxidative Stress Markers in Trained Athletes. International Journal of Environmental Research and Public Health, 17(10), 3729. https://doi.org/10.3390/ijerph17103729 DOI: https://doi.org/10.3390/ijerph17103729
Sawada, Y., Ichikawa, H., Ebine, N., Minamiyama, Y., Alharbi, A. A. D., Iwamoto, N., & Fukuoka, Y. (2023). Effects of High-Intensity Anaerobic Exercise on the Scavenging Activity of Various Reactive Oxygen Species and Free Radicals in Athletes. Nutrients, 15(1), 222. https://doi.org/10.3390/nu15010222 DOI: https://doi.org/10.3390/nu15010222
Lee, E., Park, H.-Y., Kim, S.-W., Sun, Y., Choi, J.-H., Seo, J., Jung, Y. P., Kim, A.-J., Kim, J., & Lim, K. (2023). Enhancing Supplemental Effects of Acute Natural Antioxidant Derived from Yeast Fermentation and Vitamin C on Sports Performance in Triathlon Athletes: A Randomized, Double-Blinded, Placebo-Controlled, Crossover Trial. Nutrients, 15(15), 3324. https://doi.org/10.3390/nu15153324 DOI: https://doi.org/10.3390/nu15153324
Rizzardi, N., Pezzolesi, L., Samorì, C., Senese, F., Zalambani, C., Pitacco, W., Calonghi, N., Bergamini, C., Prata, C., & Fato, R. (2022). Natural Astaxanthin Is a Green Antioxidant Able to Counteract Lipid Peroxidation and Ferroptotic Cell Death. International Journal of Molecular Sciences, 23(23), 15137. https://doi.org/10.3390/ijms232315137 DOI: https://doi.org/10.3390/ijms232315137
Kumar, S., Kumar, R., Kumari, A., & Panwar, A. (2022). Astaxanthin: A super antioxidant from microalgae and its therapeutic potential. Journal of Basic Microbiology, 62(9), 1064-1082. https://doi.org/10.1002/jobm.202100391 DOI: https://doi.org/10.1002/jobm.202100391
Yadollahi, F., Soltani, M., Modarresi, M. H., & Akhondzadeh Basti, A. (2021). Efficacy of vitamin E with or without probiotic, astaxanthin or rosemary extract on growth performance, survival, haematological parameters, antioxidant activity and liver enzymes in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Research, 52(11), 5606-5616. https://doi.org/10.1111/are.15436 DOI: https://doi.org/10.1111/are.15436
Davinelli, S., Saso, L., D’Angeli, F., Calabrese, V., Intrieri, M., & Scapagnini, G. (2022). Astaxanthin as a Modulator of Nrf2, NF-κB, and Their Crosstalk: Molecular Mechanisms and Possible Clinical Applications. Molecules, 27(2), 502. https://doi.org/10.3390/molecules27020502 DOI: https://doi.org/10.3390/molecules27020502
Wu, Y., Bashir, M. A., Shao, C., Wang, H., Zhu, J., & Huang, Q. (2024). Astaxanthin targets IL-6 and alleviates the LPS-induced adverse inflammatory response of macrophages. Food & Function, 15(8), 4207-4222. https://doi.org/10.1039/D4FO00610K DOI: https://doi.org/10.1039/D4FO00610K
Dang, Y., Li, Z., & Yu, F. (2024). Recent Advances in Astaxanthin as an Antioxidant in Food Applications. Antioxidants, 13(7), 879. https://doi.org/10.3390/antiox13070879 DOI: https://doi.org/10.3390/antiox13070879
Nian, L., Weidong, Z., Shujuan, L., Jun, C., Minlian, P., & Zhiguang, L. (2019). Astaxanthin suppresses cigarette smoke and lipopolysaccharide-induced airway inflammation through induction of heme oxygenase-1. Cellular and Molecular Biology, 65(1), 94-99. https://doi.org/10.14715/cmb/2019.65.1.17 DOI: https://doi.org/10.14715/cmb/2019.65.1.17
Bloomer, R. J. (2008). Chapter 1 Effect Of Exercise On Oxidative Stress Biomarkers (pp. 1–50). https://doi.org/10.1016/S0065-2423(08)00401-0 DOI: https://doi.org/10.1016/S0065-2423(08)00401-0
Bazzucchi, I., Patrizio, F., Ceci, R., Duranti, G., Sgrò, P., Sabatini, S., Di Luigi, L., Sacchetti, M., & Felici, F. (2019). The Effects of Quercetin Supplementation on Eccentric Exercise-Induced Muscle Damage. Nutrients, 11(1), 205. https://doi.org/10.3390/nu11010205 DOI: https://doi.org/10.3390/nu11010205
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2025 Roy Januardi Irawan, Ratna Candra Dewi, Ananda Perwira Bakti, Nanda Rimawati, Abdul Rohim Tualeka, Putri Ayuni Alayyannur, Mokhamad Nur Bawono
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
